动物科学实习报告

1、羊的体尺测量

2、鸡的体尺测量、翅静脉采血、红细胞计数

3、鸡的屠宰测定和体内器官的观察

4、猪的精液品质检查

实验一：羊的体尺测量

实验目的：鉴别羊的生长发育速度和生产性能高低，往往要根据羊身体各部位的体尺来判断，测量项目的多少视测量的目的而定。

实验对象与材料：羊，皮尺

实验操作方法：

(1)体高 由看甲最高点至地面的垂直距离。

(2)体长 由肩端至坐骨结节后端的直线距离。

(3)胸围 由肩胛骨后缘绕胸1周的长度。

(4)胸深 由看甲最高点到胸骨底面的距离。

(5)胸宽 由肩胛骨后端的左右肋骨间的宽度。

(6)管围 由管骨上1／3处的周长。

   实验结果：体高：53cm

          体斜长：49cm

          胸围：cm

          胸宽：13.9cm

          胸深：24.5cm

          管围：7.3cm

注意事项：测量时，场地要平坦，站立姿势要端正；因为羊的力气比较大，所以在测量各项指标时应该注意将羊保定，以防止伤害到同学。

实验二：鸡的体尺测量、翅静脉采血、红细胞计数

1.鸡的体尺测量

实验目的：学会家禽体尺测量的方法。

实验对象与材料：鸡、皮尺、圆形测定器

实验操作方法：

         体斜长：沿体表测量肩关节至坐骨结节间距离（厘米）

         胸宽：测量两肩关节之间的体表距离（厘米）

         胸深：第一胸椎到龙骨前缘的距离（厘米）

         龙骨长：体表龙骨突前端到龙骨末端的距离（厘米）

         胫长：从胫部上关节到第三、四间的直线距离（厘米）

实验结果：体斜长：21cm    胸宽：7.5cm    胸深：8.5cm    龙骨长：10.5cm  胫长：9.5cm

2.鸡翅静脉采血

实验目的：

  为了了解鸡的正确的翅膀采血方法和操作技巧

实验对象与材料：鸡，针头，酒精，棉花

实验操作方法：

  1.保定

  2.在上鸡翅的骨间寻找血管

  3.然后用酒精棉签檫拭消毒

  4.下针，需慢抽并深度约为1\\3针头

  5.抽完血后需干棉签堵住伤口防止流血

（图1-1 翅膀采血使用的针管）               （图1-2 翅膀采血）

3.红细胞计数

原理：一定量的血液经一定量等渗性稀释液稀释后，冲入血细胞计数池中显微镜下计数一定容积内的细胞，再换算成每升标本的细胞数报告。

实验试剂与材料： 1.红细胞稀释液，枸橼酸钠1.0 g，36%甲醛液 1.0 ml，

氯化钠 0.6 g，加蒸馏水至100 ml ,混匀、过滤两次后备用。

2. 其他 显微镜、改良Neubauer血细胞计数板等。

实验操作方法：

1.取红细胞稀释液2.0ml，放入一小试管内。

2.用血红蛋白吸管吸血至10ul处。

3.擦去管尖外部余血将血液迅速轻轻吹入盛有红细胞稀释液的试管内，吸上清液漱洗吸管2-3次，摇匀。

4.用玻棒取悬混液少量，冲入计数池内。

5.待2-3分钟，让红细胞完全下沉后，将计数板放在显微镜台上，用低倍镜观察，如红细胞分布均匀即可换高倍镜进行计数。

红细胞技术区域：中心大方格中的5个中方格（正中一个和四角各一个）。

计数原则：数上不数下，数左不数右的计数原则即凡压在中方格边线上的红细胞，只计上侧与左侧线上的细胞，而压在下侧与右侧线上的不计入。

实验结果：

计算：红细胞数/L=5个中方格内红细胞数÷100×1012

                         =158÷100×1012

                =1.58×1012

注意事项

1.吸管、试管要注意清洁、干燥以防溶血，操作迅速避免血液凝固，如有血凝块应重新采血。

2.充液前，红细胞复液要充分摇匀，红细胞悬液注入计数池内要求分布均匀，不可有气泡，亦不可有多余液体外溢。

实验三：鸡的屠宰测定和体内器官的观察

   实验目的：

1、学习鸡屠宰方法和步骤，掌握屠宰率测定及计算方法。

 2、了解鸡体内各器官的相互关系和解剖结构。

 二、材料和用具 

公、母鸡若干只、解剖刀、手术剪、镊子、解剖台、台秤、电子秤、温度计、瓷盘、骨剪、胸角器、游标卡尺、皮尺、粗天平、吊鸡架、承血盆。 

实验操作和方法：

 1、鸡的屠宰测定 

（1）宰前的准备 

①家禽屠宰前必须先禁食12-24h，只烘饮水，其目的既可节省饲料还可使放血完全，保证肉的品质优良和屠体美观。 

②屠宰前为避免药物残留，应按规定程序停止在饲料中添加药物。

 ③称活体重。

（2）放血 

①颈外放血法  左手握鸡两翅，将其颈向背部弯曲，并以左手拇指和食指固定其头，同时左手小指勾住鸡的一脚。右手将鸡耳下颈部宰杀部位的羽毛拔净后用刀切断颈动脉或颈静脉血管，放血致死。血放于承血盆中。 

②口腔内放血法  将鸡两腿分开倒悬于吊鸡架上，左手握鸡头于手掌中并用拇指及食指将鸡嘴顶开，右手将解剖刀的刀背与舌面平等伸入口腔，待刀伸入至左耳部时将刀翻转使刀口朝下，用力切断颈静脉和桥形静脉联合处，然后再将刀抽出转向硬腭处裂缝中部（两眼间）斜刺延脑，破坏脑神经中枢。此法使屠体没有伤口，外表完整美观，放血完全，死亡快。 

以上两种方法待血流尽后立刻称体重求得血重。此外，还有电刺法适用于火鸡、鹅等体重大的家禽。 

（3）拔毛 

①干拔法  应用口腔内放血宰杀的家禽可用干拔法，在血放尽后，将羽毛拔去。注意勿损伤皮肤。 

②湿拔法  在血放净后，用50-80℃的热水浸烫，让热水渗进毛根，因毛囊周围骨肉的放松而便于拔毛。注意水温和浸烫时间要根据鸡体重的大小、季节差异和鸡的日龄而异，不宜太高温度和浸烫太久。一般以能拔下毛而不伤皮肤为准。拔毛顺序为：尾—翅—颈—胸—背—臀—两腿粗毛—绒毛。拔完羽毛后沥干水称屠体重并求毛重。 

（4）屠体外观检查   检查屠体表面是否有病灶、损伤、淤血。如鸡痘、肿瘤、胸囊肿、胸骨弯曲、大小胸、脚趾瘤、外伤、断翅或淤血块等。 

（5）分割、去内脏  割除头、颈、脚。脚从踝关节分割并剥去脚皮、趾壳，头从枕寰关节处割下，颈部从肩胛骨处割下。 

为防止屠体污染，开腹前先挤压肛门，使粪便排出。在胸骨剑突与泄殖腔之间切一切，掏出内脏，仅留肺脏和肾脏。 

2、泌尿生殖系统和消化系统的观察 

（1）准备 

①屠宰方法、屠体外观检查，同前述。 

②切开胸侧壁与大腿间的皮肤，用力掰开髋关节，让其脱臼。这样屠体可稳定地呈仰卧姿势。 

③在胸剑突下方横切一刀，切口伸向腹部两侧。再从切口下缘沿腹部中线纵向切开腹腔，露出腹腔脏器。 

④从腹壁两侧，沿椎骨肋与胸骨肋结合的关节处，纵向向前剪开至肩关节处，再用骨剪剪断锁骨和乌喙骨。稍用力向上掀开整个胸壁，露出胸腔脏器。 

（2）观察  先总体观察胸腔、腹腔各脏器位置，并观察气囊。 

①生殖系统 

母鸡观察：a.卵巢:识别卵泡、卵泡囊外的血管和卵泡带（破裂缝）以及排卵后的卵泡膜；b.输卵管：观察输卵管的漏斗部（伞部、腹腔口、颈部）膨大部（蛋白分泌部）、峡部、子宫部、阴道部和输卵管在泄殖腔的开口等部分的位置、形态及分界处。 

公鸡生殖器官：睾丸、附睾和输精管的形态、位置（观察公鸡生殖器官司应在观察消化系统之后）。

②消化系统  首先摘除母鸡输卵管，然后剪开口腔，露出舌和上颌背侧前部硬腭的腭裂（位于相对于两眼位置，为斜刺延脑位置）。从上至下依次观察：口腔（喙、舌、咽）；

食管和嗉囊（鸭为纺锤形的食道膨大部）；腺胃（切开露腺胃乳头突起）；肌胃（切开露出角质膜）；小肠（十二指肠、空肠、回肠）以及胰腺、胆囊、肝脏；大肠（盲肠、直肠）以及盲肠扁桃体；泄殖腔。 

③泌尿系统  摘除消化器官，露出紧贴于鸡腰部内侧的泌尿系统，包括肾脏、输尿管和泄殖腔。 

④其他脏器  观察  心脏、肺脏、脾脏、法氏囊、胸腺、坐骨神经和卵黄柄等等。

实验四：猪的精液品质检查

精子活率检测及密度测定    

实验目的：掌握检查精子密度、评定活率的方法；熟悉肉眼检查精液品质的方法；验证观察理化因素对精子运动及生存能力的影响。

实验材料

    1．精液：猪新鲜精液20ml，牛、羊细管冻精各10只。

2．药品及作品：显微镜50台、载玻片60片、盖玻片2盒、搪瓷盘4个、温度计1只、擦镜纸1盒、纱布包、3%和0.9%氯化钠溶液、70%酒精，10ml试管10只、1ml移液器1支，100ul移液器4支、灭菌1ml和200ul头各1盒。

实验内容

  （一）精液的肉眼观察

     1．射精量

     2．色泽、气味

    3．云雾状的观察

   （二）精子密度检查及活率评分

     1．检查精子的密度

     2．评定精子的活率

    精子活动有三种类型：直线前进运动、旋转运动和原地摆动。评价精子活率是根据直线前进运动精子数的多少而定。

精子活率＝×100%

  （三）死活精子百分率测定

活精子百分率＝×100%

实验结果：精子密度=5个中方格总精子数×5×10×1000×10倍

                  =237×5×10×1000×10

                  =1.185亿

          精子活率=196÷237=82.7%

精子畸形率的测定    

实验目的

掌握用血球计数板检查单位容积（毫升）中所含精子数的方法，以及测定精子畸形率的操作要点。

实验材料

1、材料：猪新鲜精液20ml，液氮保存的牛、羊细管冻精各10只。

2、器械及用品：显微镜50台、载玻片60块、盖玻片2盒、玻棒、0.9%Nacl溶液、95%和75%的酒精、染色缸10个、洗瓶6个，3%NaCl、红墨水二瓶、10ml试管10只、1ml移液器1支，100ul移液器4支、灭菌1ml和200ul头各1盒。

3、畸形精子形态图。

实验内容

测定精子畸形率

实验步骤：

1、以细玻璃棒蘸精液一滴，滴于载玻片上一端，如果是牛羊精液应再加1-2滴0.9%氯化钠溶液。

2、以另一载玻片的顶端呈35°角抵于精液滴上，并向另一端推去，将精液均匀涂抹于载玻片上。

3、将抹片放于空气中干燥。

4、用下列方法中的任一方法固定染色。

①用0.5%的龙胆紫酒精染色三分钟，水洗，待干后即可镜检（也可用由普通红蓝墨水代替）

②置95%酒精中（或5%溶液）固定5-6分钟，取出以水冲洗后，凉干或烘干，用蓝、红墨水等染色3-5分钟，再用水冲洗，干燥后置于显微镜下检查。

5、镜检：将制好的抹片置于显微镜下，查数不同视野的500个精子，计算出其中所含畸形精子数，求出畸形百分率。

实验结果：精子畸形率=60÷500=12%

总结：

通过这次专业技能竞赛，我对所学的专业又加强巩固了一些，对此专业也更感兴趣。理论要用于实践，从实践中又能获得理论，所以，我希望学院能多开展这样的技能竞赛和实验。