最新文章专题视频专题问答1问答10问答100问答1000问答2000关键字专题1关键字专题50关键字专题500关键字专题1500TAG最新视频文章推荐1 推荐3 推荐5 推荐7 推荐9 推荐11 推荐13 推荐15 推荐17 推荐19 推荐21 推荐23 推荐25 推荐27 推荐29 推荐31 推荐33 推荐35 推荐37视频文章20视频文章30视频文章40视频文章50视频文章60 视频文章70视频文章80视频文章90视频文章100视频文章120视频文章140 视频2关键字专题关键字专题tag2tag3文章专题文章专题2文章索引1文章索引2文章索引3文章索引4文章索引5123456789101112131415文章专题3
当前位置: 首页 - 正文

干细胞-骨髓间充质干细胞-大鼠骨髓间充质干细胞的PKH26标记和示踪

来源:动视网 责编:小OO 时间:2025-09-28 00:34:45
文档

干细胞-骨髓间充质干细胞-大鼠骨髓间充质干细胞的PKH26标记和示踪

中国组织工程研究第16卷第14期2012–04–01出版ChineseJournalofTissueEngineeringResearchApril1,2012Vol.16,No.14ISSN1673-8225CN21-1581/RCODEN:ZLKHAH2487DepartmentofObstetricsandGynecology,ZhujiangHospitalofSouthernMedicalUniversity,Guangzhou510282,GuangdongProvince,Chi
推荐度:
导读中国组织工程研究第16卷第14期2012–04–01出版ChineseJournalofTissueEngineeringResearchApril1,2012Vol.16,No.14ISSN1673-8225CN21-1581/RCODEN:ZLKHAH2487DepartmentofObstetricsandGynecology,ZhujiangHospitalofSouthernMedicalUniversity,Guangzhou510282,GuangdongProvince,Chi
中国组织工程研究 第16卷 第14期 2012–04–01出版

Chinese Journal of Tissue Engineering Research April 1, 2012 Vol.16, No.14

ISSN 1673-8225 CN 21-1581/R CODEN: ZLKHAH

2487Department of

Obstetrics and

Gynecology, Zhujiang Hospital of Southern Medical University, Guangzhou

510282, Guangdong Province, China

Peng Yan ☆, Studying for doctorate, Department of Obstetrics and

Gynecology, Zhujiang Hospital of Southern Medical University, Guangzhou

510282, Guangdong Province, China pengyansisi@ 126.com

Corresponding author: He Yuan-li, Chief physician, Professor, Department of Obstetrics and

Gynecology, Zhujiang Hospital of Southern Medical University, Guangzhou

510282, Guangdong Province, China yahoo.com.cn

Received: 2011-08-26 Accepted: 2011-09-30

大鼠骨髓间充质干细胞的PKH26标记和示踪☆

彭 艳,何援利,朱少芳

Rat bone marrow mesenchymal stem cells labeled and tracked with PKH26

Peng Yan, He Yuan-li, Zhu Shao-fang Abstract Peng Y, He YL, Zhu SF. Rat bone marrow mesenchymal stem cells labeled and tracked with PKH26.Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu. 2012;16(14): 2487-2490. [http://www.crter.cn http://en.zglckf.com]

摘要 关键词:细胞标记;PKH26;骨髓间充质干细胞;移植;迁移转归

缩略语注释:BMSCs :bone marrow mesenchymal stem cells ,骨髓间充质干细胞 doi:10.3969/j.issn.1673-8225.2012.14.004

彭艳,何援利,朱少芳. 大鼠骨髓间充质干细胞的PKH26标记和示踪[J].中国组织工程研究,2012,16(14):2487-2490. [http://www.crter.org http://cn.zglckf.com]

0 引言

骨髓间充质干细胞 (bone marrow mesenchymal stem cells ,BMSCs)是定居于骨髓微环境中的一种成体干细胞,具有自我增殖、多向分化的潜能,已成为组织工程的理想种子细胞。近年有报道骨髓来源干细胞可能是子宫内膜干细胞的来源

[1-2]

。BMSCs 是否可以迁移至

子宫内膜参与生理性更新和损伤修复成为研究热点。标记示踪细胞是干细胞移植研究的重要环节。本实验采用PKH26对大鼠BMSCs 进行标记示踪,观察其对细胞形态、增殖、凋亡、周期、诱导分化等生物学特征的影响,并通过大鼠尾静脉移植观察其在大鼠子宫内膜组织中的

迁移情况,寻找一种长期稳定直观而又不影响细胞分化能力的标记示踪方法,为研究大鼠BMSCs 在子宫内膜组织中分化转归奠定实验基础。

1 材料和方法

设计:观察对比性实验。

时间及地点:于2011-03/06在南方医科大学珠江医院再生医学研究所完成。

材料:近交系SPF 级Wistar 雄性大鼠8只,4~6周龄,60~90 g ; Wistar 雌性大鼠10只,8~12周龄,100~140 g ,由南方医科大学动物中心提供,许可证号scxk(粤):2006-0015。实验过程中对动物的处置符合医学伦理学标准。

彭艳,等. 大鼠骨髓间充质干细胞的PKH26标记和示踪

P .O. Box 1200, Shenyang 110004 cn.zglckf.com

2488

www.CRTER

.org

南方医科大学珠江医院妇产科,广东省广州市 510282

彭艳☆,女,1978年生,江苏省海门市人,汉族,南方医科大学在读博士,主要从事子宫内膜异位症及干细胞的研究。 pengyansisi@ 126.com

通讯作者:何援利,主任医师,教授,南方医科大学珠江医院妇产科,广东省广州市 510282

heyuanli310@ yahoo.com.cn

中图分类号:R394.2 文献标识码:A

文章编号:1673-8225 (2012)14-02487-04

收稿日期:2011-08-26

修回日期:2011-09-30 (20110720014 /D ·C)

主要试剂:

方法:

BMSCs 的分离、培养及扩增

[3-4]

:用3.6%的水合

氯醛腹腔注射麻醉Wistar 雄性大鼠后,无菌条件下取出胫骨和股骨,用DMEM-F12培养基冲洗骨髓腔,得到细胞悬液,转入离心管用1 000 r/min 离心5 min ,倒去上清液,沉淀用含体积分数10%胎牛血清的DMEM-F12培养基10 mL(添加青霉素100 U/mL 、链霉素100 g/mL)混匀后,各取5 mL 接种于75 mL (25 cm 2

)培养瓶中,置于37 ℃、体积分数5%CO 2培养箱中恒温培养。 3 d 后去除未贴壁细胞,三四天换液1次。细胞80%融合时,0.25%胰酶室温消化,用含体积分数10%胎牛血清的培养液终止消化反应,用吸管轻轻吹打瓶壁细胞,促进细胞脱壁。转入离心管1 000 r/min 离心5 min ,弃上清,细胞沉淀按1∶3比例传代扩增培养。

BMSCs 免疫表型分析:取第2代的大鼠

BMSCs 制成单细胞悬液,流式细胞仪检测CD34、CD44、CD45、CD29的表达。

PKH26标记BMSCs :胰酶消化第2代大鼠

BMSCs 形成单细胞悬液,取2×107细胞于锥形离心管中,用无血清培养基洗1次,400 g 离心 5 min 形成松散的细胞团。吸去上清,细胞团上剩余液体小于25 μL 。根据试剂盒说明书加1 mL 稀释液C ,重悬细胞保证完全离散,别震荡。染色前,准备4×10-6 mol/L 的PKH26染液(用稀释液C 稀释)置于离心管中。尽快加1 mL 的2×细胞到1 mL 的2×染料,立即用吸管均匀快速混合样品,因为均匀的染色是在瞬间发生的。25 ℃孵育2~5 min ,定时轻轻颠倒离心管保证在25 ℃充分混匀。加入等量血清中止染色反应,孵育1 min ,用等量含血清培养基稀释中止的反应液。25 ℃ 400 g 离心10 min ,去上清。细胞团转入新试管中,洗3次。加10 mL 完全培养基,离心,重新悬置细胞到所需浓度,荧光显微镜下观察细胞染色情况。随机选取5个视野,计算标记率(暗视野下红色荧光细胞数/明视野下细胞总数),平均值即为PKH26的即时标记率。留取部分细胞培养观察细胞复苏情况。

细胞增殖能力观察:取第3代的未标记细胞和

已标记细胞应用CCK-8试剂盒检测增殖能力,

连续检测7 d 。

细胞凋亡及细胞周期检测:收集第3代的未标

记细胞和已标记细胞,使用PI 染色法检测细胞周期,Annexin-V 法检测凋亡率。

BMSCs 成骨成脂诱导及鉴定:取第2代大鼠

BMSCs 进行PKH26荧光标记,以2×105个分别接种于25 cm 2培养瓶内进行成骨和成脂诱导,当细胞达到80%融合后将培养液更换诱导培养液。成骨诱导培养液成分为:含体积分数10%胎牛血清的DMEM-F12培养基,10 mmol/L β-甘油磷酸钠,0.05 mmol/L 维生素C ,100 mmol/L 地塞米松。每3 d 更换诱导培养液,诱导14 d 后茜素红染色,倒置显微镜下观察染色情况。成脂诱导培养液成分为:含体积分数10%胎牛血清的DMEM-F12培养基,1 µmol/L 地塞米松, 0.5 mmol/L 异丁基甲基黄嘌呤,0.2 mmo1/L 吲哚美辛,10 µmo1/L 胰岛素。每3 d 更换诱导培养液,诱导14 d 后油红O 染色,倒置显微镜下观察染色情况。

PKH26标记的BMSCs 在大鼠子宫内膜组织中的迁移分布:实验组5只雌性大鼠尾静脉注射

1×1010 L -1PKH26标记的BMSCs 1 mL 。对照组5只雌性大鼠尾静脉注射生理盐水1 mL 。移植后6周,取大鼠子宫冰冻切片后4,6-联脒- 2-苯基吲哚(DAPI)染核,荧光显微镜观察PKH26标记的BMSCs 在子宫内膜组织的分布情况。

主要观察指标:BMSCs ①的鉴定。PKH26②标记细胞结果。PKH26③对细胞增殖、凋亡和周期的影响。PKH26④标记细胞的体外成骨成脂诱导分化情况。⑤标记细胞在子宫内膜的分布。

统计学分析:用SPSS 13.0统计软件进行分析。计量资料用t 检验,结果以x _

±s 表示,P < 0.05为差异有显著性意义。

2 结果

2.1 BMSCs 形态观察及生长情况 原代细胞接种后24 h ,部分细胞贴附于瓶底,形态不规则,细胞边缘呈小锯齿状。72 h 后绝大部分细胞贴壁,呈短梭形、多角形,并有小集落形成。培养6~9 h 后,细胞生长融合成片,铺满瓶底的80%,可进行细胞的首次传代.经消化传代培养的细胞生长迅速,3~5 h 铺满瓶底的80%,形态趋于一致,多为长梭状,排列有序,见图1。

试剂

来源 DMEM-F12培养基、胰蛋白酶 胎牛血清

PKH26试剂盒

CCK-8

试剂盒

Hyclone 公司 Gibco 公司 Sigma 公司 同仁化学公司

彭艳,等. 大鼠骨髓间充质干细胞的PKH26标记和示踪

ISSN 1673-8225 CN 21-1581/R CODEN: ZLKHAH

24

www.CRTER

.org

2.2 BMSCs 表面标志的测定 培养至第2代,99.86%的细胞CD29阳性,99.49%的细胞CD44阳性,而仅有2.16%的细胞CD34阴性,1.26%的细胞CD45阴性,证实为BMSCs ,见图2。

2.3 BMSCs 标记结果 PKH26染色的大鼠BMSCs 标记率达100%,染料在细胞膜上分布均匀,在倒置荧光显微镜下呈红色荧光,细胞轮廓清晰,见图3a 。继续培养24 h 后荧光显微镜下观察呈红色,见细胞贴壁、形态及生长状态良好,见图3b 。

2.4 BMSCs 标记组和未标记细胞增殖能力的检测 两组细胞各时间点的吸光值差异无显著性意义(P > 0.05),

见图4。

2.5 BMSCs 标记组和未标记组的细胞凋亡检测 标记组与未标记组的细胞凋亡率分别(1.60±0.30)%,(1.41± 0.21)%,差异无显著性意义(P > 0.05)。

2.6 BMSCs 标记组和未标记组细胞的周期检测 大部分细胞处于静止期及DNA 合成前期(G 0~G 1期),只有少数处于DNA 复制期(S 期)、DNA 合成后期及有丝期(G 2~M 期)。两组细胞各期的细胞比例差异无显著性意义(P > 0.05)。见表1。

2.7 成骨成脂诱导及鉴定 成骨诱导后3 d ,细胞逐渐变成短梭形,约10 d 形成结节样结构,诱导第14天茜素红染色为阳性,见图5a 。成脂诱导后3 d ,细胞回缩变为多角形,内可见小脂滴,诱导第14天油红O 染色可见细胞内脂肪滴染色呈阳性,见图5b 。

a: Labeled BMSCs without

adherence

Figure 1 Passage 2 bone marrow mesenchymal stem cells (×200)

图1 第2代大鼠骨髓间充质干细胞(×200)

Figure 2 Flow cytometry analysis of passage 2 bone marrow mesenchymal stem cells surface markers

2 第2代骨髓间充质干细胞表面标志流式细胞仪检测结果Figure

3 Bone marrow mesenchymal stem cells (BMSCs)

labeled with PKH26 (×200) 图3 PKH26标记骨髓间充质干细胞(×200)

b: Observation of labeled BMSCs after adherence for 24 h

Figure 4 Growth curves of labeled and unlabeled bone marrow mesenchymal stem cells

图4 标记组与未标记组细胞生长曲线的比较

0.80.70.60.50.40.30.2

M e a n

1

2

3

45

6

7

Time (d)

Absorbance value in labeled group (Mean) Absorbance value in unlabeled group (Mean)

a: Alizarin red staining

after osteogenic induction

Figure 5

Osteogenic and adipogenic induction of bone marrow mesenchymal stem cells and identification by PKH26 (×200) 图5 PKH26标记骨髓间充质干细胞的成骨成脂诱导及鉴定

(×200)

b: Oil red O staining after adipogenic induction

彭艳,等. 大鼠骨髓间充质干细胞的PKH26标记和示踪

P .O. Box 1200, Shenyang 110004 cn.zglckf.com

2490

www.CRTER

.org

2.8 BMSCs 移植后在大鼠子宫内膜组织中的分布 大鼠尾静脉移植BMSCs ,6周后荧光显微镜观察可见PKH26标记的BMSCs 呈红色荧光,可散在分布于子宫内膜的间质和腺上皮中,见图6。对照组子宫内膜未见红色荧光。

3 讨论

BMSCs 在组织工程中具有广阔的应用前景。间充质干细胞移植首先遇到的困难之一是如何标记移植细胞,示踪其存活、生长、分化等的过程[5-8]。目前已建立了较多的细胞标记技术,包括BrdU 标记、DAPI 标记、GFP 标记技术、Y 染色体标记、磁性标记技术等等。但是这些技术还存在一些问题。BrdU 的标记率不高且标记细胞凋亡或死亡后释放的BrdU 则可掺入处于细胞周期S 期的任何细胞,难以区分移植细胞和宿主细胞,假阳

性高[9]

。DAPI 标记时细胞会导致DAPI 淬灭,示踪时

间短。GFP 标记存在着转染效率不高以及转染后阳性克隆难以扩增

[10]

。Y 染色体标记检测试剂价格昂贵[11]

。磁

性标记技术对试剂和检测设备要求较高[12]。因此,需要寻找一种有效、稳定、实用的细胞标记技术示踪BMSCs 在体内的迁移情况。

PKH26是一种亲脂性荧光染料,与细胞膜发生不可逆性结合,对细胞进行荧光标记,其在551 nm 波长处可被激发红色荧光。随着细胞,标记物也随之等份的分配给子细胞。PKH26标记的细胞移植后不会从死亡或凋亡的细胞中释放出来,能够很好地区分移植细胞和宿主细胞,形成精确的荧光标记,在体内甚至有标记神经干细胞超过1年的记录[13]。目前广泛用于动物、植物细

胞和其他含颗粒胞膜的标记,细胞毒副作用不明显。本实验中PKH26标记不影响BMSCs 的细胞增殖、凋亡和细胞周期,仍保持其多分化潜能,成为研究干细胞迁移示踪的理想工具。移植后6周在子宫内膜组织可见PKH26标记的BMSCs 散在分布于间质和腺上皮,有效示踪BMSCs 在子宫内膜组织的迁移情况,为其在子宫内膜组织中的分化转归研究提供有效途径。相对于其他标记方法,PKH26标记效率高、细胞毒性小、不影响细胞生长特性和分化、荧光保存的时间比较长、标记和观察都方便易行,费用低廉且不会因为染料渗漏到周围细胞造成检测的假阳性。

综上所述,PKH26是BMSCs 有效的标记方法,稳定示踪在体内中的迁移情况,为研究BMSCs 在体内的分化转归等研究奠定基础。

4 参考文献

[1] Du H, Taylor HS. Contribution of bone marrow-derived stem cells to endometrium and endometriosis. Stem Cells.2007;25(8): 2082-2086.

[2]

Ikoma T , Kyo S, Maida Y , et al. Bone marrow-derived cells from male donors can compose endometrial glands in female

transplant recipients. Am J Obstet Gynecol. 2009;201(6): 608: e1-8.

[3] Deng XL, Lau CP , Lai K, et al. Cell cycle-dependent expression of potassium channels and cell proliferation in rat mesenchymal stem cells from bone marrow. Cell Prolif.2007;40(5):656-670.

[4]

Liu Y , Zhang X, Dai Y , et al. Effects of bone marrow mesenchymal stem cells on learning and memory functional recovery in

neonatal rats with hypoxic-ischemic brain damage. Zhonghua Er Ke Za Zhi. 2008;46(9):8-653.

[5]

Silva GV, Litovsky S, Assad JA, et al. Mesenchymal stem cells differentiate into an endothelial phenotype, enhance vascular

density, and improve heart function in a canine chronic ischemia model. Circulation. 2005;111(2):150-156.

[6]

Yoon YS, Wecker A, Heyd L, et al. Clonally expanded novel multipotent stem cells from human bone marrow regenerate

myocardium after myocardial infarction. J Clin Invest. 2005;115(2): 326-338.

[7]

Woodbury D, Reynolds K, Black IB. Adult bone marrow stromal stem cells express germ line, ectodermal, endodermal, and

mesodermal genes prior to neurogenesis. J Neurosci Res. 2002; 69(6):908-917.

[8] Ouyang HW, Cao T , Zou XH, et al. Mesenchymal stem cell sheets revitalize nonviable dense grafts: implications for repair of large-bone and tendon defects. Transplantation. 2006;82(2):170-174.

[9]

Burns TC, Ortiz-González XR, Gutiérrez-Pére M, et al. Thymidine analogs are transferred from prelabeled donor to host cells in the central nervous system after transplantation: a word of caution. Stem Cells. 2006;24(4):1121-1127.

[10] Wagers AJ, Sherwood RI, Christensen JL, et al. Little evidence for developmental plasticity of adult hematopoietic stem cells. Science. 2002;297(5590):2256-2259.

[11] O'Leary MT , Blakemore WF. Use of a rat Y chromosome probe to determine the long-term survival of glial cells transplanted into areas of CNS demyelination. J Neurocytol. 1997;26(4):191-206. [12] Bulte JW, Duncan ID, Frank JA. In vivo magnetic resonance tracking of magnetically labeled cells after transplantation. J Cereb Blood Flow Metab. 2002;22(8):9-907.

[13]

Modo M, Beech JS, Meade TJ, et al, A chronic 1 year assessment of MRI contrast agent-labelled neural stem cell transplants in stroke. Neuroimage.2009;47 Suppl 2: 133-142.

a:PKH26 labeled BMSCs

Figure 6 Distribution of PKH26 labeled bone marrow

mesenchymal stem cells (BMSCs) (arrow: red) in endometrium (×400) 图6 PKH26标记(箭头所示:红色)的骨髓间充质干细胞在子

宫内膜的分布(×400)

b: DAPI nuclear staining of BMSCs

c: Image synthesis

文档

干细胞-骨髓间充质干细胞-大鼠骨髓间充质干细胞的PKH26标记和示踪

中国组织工程研究第16卷第14期2012–04–01出版ChineseJournalofTissueEngineeringResearchApril1,2012Vol.16,No.14ISSN1673-8225CN21-1581/RCODEN:ZLKHAH2487DepartmentofObstetricsandGynecology,ZhujiangHospitalofSouthernMedicalUniversity,Guangzhou510282,GuangdongProvince,Chi
推荐度:
  • 热门焦点

最新推荐

猜你喜欢

热门推荐

专题
Top