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Tricine PAGE

来源:动视网 责编:小OO 时间:2025-09-30 08:27:09
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Tricine PAGE

TricineSDS-PAGEProtocol(两层法)一、缓冲液的配置:1.正极缓冲液anodebuffer(1X):0.2MTris(pH8.9):12.114g加H20定容至500ml,4℃保存。2.负极缓冲液cathodebuffer(1X):0.1MTris+0.1MTricine+0.1%SDS不用调pH:6.057gTris+8.96gTricine+0.5gSDS加H20定容至500ml,4℃保存。3.凝胶缓冲液gelbuffer(G-B,3X):36.342gTris+0.3
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Tricine SDS-PAGE Protocol(两层法)

一、缓冲液的配置:

1.正极缓冲液anode buffer(1X):

0.2M Tris(pH 8.9):12.114g加H20定容至500ml, 4℃保存。

2.负极缓冲液 cathode buffer (1X):

0.1M Tris +0.1M Tricine+0.1%SDS 不用调pH:

6.057gTris+8.96gTricine+0.5g SDS 加H20定容至500ml, 4℃保存。

3. 凝胶缓冲液 gel buffer(G-B, 3X):

36.342gTris+0.3gSDS加H20定容至100ml H20,HCL调pH 8.45,过滤4℃保存。体积会扩大1/3

4. AB-3 储存液(49.5%T,3%Cmixture):LowBis

24g丙烯酰胺+0.75g甲叉双丙烯酰胺 加H20定容至50ml,过滤4℃保存。,体积会扩大1/3

5.AB-6储存液(49.5%T,6%Cmixture):HighBis

23.25g丙烯酰胺+1.5g甲叉双丙烯酰胺 加H20定容至50ml,过滤4℃保存。体积会扩大1/3

二、具体的步骤:

1.按如下配方制备分离胶和积层胶:

                         4% 积层胶(3ml)       10%分离胶(8ml)

AB-3(mL)                             0.25 

AB-6(mL)                                                  1.6

3×gel buffer(mL)                    0.75                 2.67

甘油(mL) --                                               0.63

H20(mL)                              2                    3.1

10% APS(uL)                            22.5                 40

TEMED(uL)                               2.25                 4

先注入分离胶,待分离胶凝固后(0.5-1小时),注入积层胶。待积层胶凝固后(0.5-1小时)。

2. 上样电泳:

    总蛋白取25uL,细胞组分蛋白根据BCA定量后取75ug,加入6×SDS上样缓冲液煮沸5 分钟,12000rpm离心2分钟,取上清进行蛋白电泳。准备电泳时,在电泳槽底部加入正极缓冲液,将制好的胶连同其装置放入电泳槽内,在两块胶之间注入负极缓冲液,用30V的电压预电泳10分钟,然后上样。当染料从积层胶进入分离胶后,电压加到90V,继续电泳直到溴酚蓝抵达分离胶底部,断开电源停止电泳。整个电泳过程在冰上或4℃进行。

3. 转膜和抗体孵育

    1)电泳近结束时,将裁好的与凝胶尺寸相当的PVDF膜先用甲醇浸透活化后,用去离子水漂洗,然后浸泡在转移缓冲液中。另外,裁剪六张尺寸一致的滤纸连同海绵垫一起置于转移缓冲液中浸泡。

    2)电泳结束后,小心取出凝胶,浸泡于转移缓冲液中,在转移缓冲液中安装转移装置,从负极到正极按如下顺序装置:海绵垫、三层滤纸、凝胶、PVDF膜、三层滤纸、海绵垫。注意清除各层之间的气泡。转移装置放在搅拌器上并冰浴。连接好电源后,调整电压100V,湿转1-1.5小时。

    3)转膜结束后,用TBST缓冲液漂洗PVDF膜2次,每次5分钟,之后加入20mL封闭液完全浸泡膜,室温平摇2小时。

    4)根据预染Marker显示的分子量,在相应的范围内,将含有目的蛋白的区域剪下,放入预先准备好的含一抗的封闭液中,用塑料袋封好,4℃缓慢侧摇过夜。

    5)取出PVDF膜浸入TBST缓冲液,平摇洗膜三次,每次10分钟。

    6)在封闭液中按1:10000~20000比例加入辣根过氧化物酶标记的二抗,将膜置于其中,室温侧摇0.5-1小时。

    7)取出PVDF膜浸入TBST缓冲液,平摇洗膜四次,每次10分钟。

4.  化学发光显色:

    1)在暗室中,取等量的Stable Peroxide Solution和Luminiol/Enhancer Solution混匀后,将PVDF膜浸泡其中,轻轻晃动,直至可以看到荧光,一般3~5分钟。

    2)将膜取出,用滤纸吸干多余的液体,放入塑料保护膜中。

    3)将封好的膜放入暗盒中,加入X光片,根据荧光的强弱,曝光5秒~1分钟不等。

    4)取出X光片,放入显影液中,直至条带出现,这时可以根据条带的效果,再次调整曝光的时间。

    5)将显影后的X光片用自来水清洗后,放入定影液中定影5~10分钟,再用自来水后晾干、拍照。

注意事项:配制缓冲液时,丙烯酰胺和TRIS溶液体积会增大,必须定容

PVDF转移膜:PVDF是一种高强度、耐腐蚀的物质,通常是用来制造水管的。PVDF膜可以结合蛋白质,而且可以分离小片段的蛋白质,最初是将它用于蛋白质的序列测定,因为纤维素膜在Edman试剂中会降解,所以就寻找了PDVF作为替代品,虽然PDVF膜结合蛋白的效率没有纤维素膜高,但由于它的稳定、耐腐蚀使它成为蛋白测序理想的用品,一直沿用至今。PVDF膜与纤维素膜一样,可以进行各种染色和化学发光检测,也有很广的适用范围。这种PVDF膜,灵敏度、分辨率和蛋白亲和力在精细工艺下比常规的膜都要高,非常适合于低分子量蛋白的检测。

  但是使用PVDF膜前,一定要先用无水甲醇预处理,再在transfer buffer中平衡好才可以使用(PVDF膜用甲醇泡的目的是为了活化PVDF膜上面的正电基团,使它更容易跟带负电的蛋白质结合)。经过预处理的PVDF膜在转膜时,可以使用不含甲醇的transfer buffer。而使用NC膜时,有的需要用无水甲醇处理,有的则不必,直接用transfer buffer平衡好就可以了。

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