
BCA 双辛丹宁(金鸡丹)
二. 试剂盒组份 组 份 Cat: KGPBCA (250 assay酶标板/50assay 1mL比色杯) 蛋白标准溶液(0. 5 μg/μL ) 5 mL BCA试剂A 25 mL×2 BCA试剂B 1mL
三. 操作步骤
A. 酶标板操作
1. 标准曲线的绘制:取一块酶标板,按照下表加入试剂 孔号 0 1 2 3 4 5 6 7 蛋白标准溶液(μL) 0 1 2 4 8 12 16 20 去离子水(μL) 20 19 18 16 12 8 4 0 对应蛋白含量(μg) 0 0.5 1.0 2.0 4.0 6.0 8.0 10.0
| 孔号 | 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
| 蛋白质溶液(μL) | 0 | 1 | 2 | 4 | 8 | 12 | 16 | 20 |
| 去离子水(μL) | 20 | 19 | 18 | 16 | 12 | 8 | 4 | 0 |
| 相应蛋白质含量(μg) | 0 | 0.5 | 1 | 2 | 4 | 6 | 8 | 10 |
3. 各孔加入200μL BCA工作液;
4. 把酶标板放在振荡器上振荡30sec,37℃放置30分钟,然后在562nm下比色测定。以蛋白含量(μg)为横坐标,吸光值为纵坐标,绘出标准曲线;
5. 稀释待测样品至合适浓度,使样品稀释液总体积为20μL,加入BCA工作液200μL,充分混匀,37℃放置30分钟后,以标准曲线0号管做参比,在 562nm波长下比色,记录吸光值;
6. 根据所测样品的吸光值,在标准曲线上即可查得相应的蛋白含量(μg),除以样品稀释液总体积(20μL),乘以样品稀释倍数即为样品实际浓度(单 位:μg/μL)。
B. 分光光度计测定
1. 标准曲线的绘制:各管按照下表加入试剂 孔号 0 1 2 3 4 5 6 7 蛋白标准溶液(μL) 0 5 10 20 40 60 80 100 去离子水(μL) 100 95 90 80 60 40 20 0 对应蛋白含量(μg) 0 2.5 5.0 10.0 20.0 30.0 40.0 50.0
2. 根据样品数量,按50体积BCA试剂A加1体积BCA试剂B(50:1)配制适量BCA工作液,充分混匀;
3. 各管加入1000μL BCA工作液;
4. 各管充分混匀,37℃放置30分钟,然后在562nm下比色测定。以蛋白含量(μg)为横坐标,吸光值为纵坐标,绘出标准曲线;
5. 稀释待测样品至合适浓度,样品稀释液总体积为100μL,加入BCA工作液1000μL,充分混匀,37℃放置30分钟后,以标准曲线0号管做参比,在 562nm波长下比色,记录吸光值;
6. 根据所测样品的吸光值,在标准曲线上即可查得相应的蛋白含量(μg),除以样品稀释液总体积(100μL),乘以样品稀释倍数即为样品实际浓度(单 位:μg/μL)。
四. 注意事项
1. 配制好的混合BCA工作液室温24小时内稳定。
2. 加入BCA工作液后,也可以在室温放置2小时,或60℃放置30分钟。BCA法测定蛋白浓度时,吸光度会随着时间的延长不断加深。并且显色反应会因温度升 高而加快。如果浓度较低,适合在较高温度孵育,或延长孵育时间。
3. 待测样品浓度在50~2000微克/毫升浓度范围内有较好的线性关系。
4. BCA法测定蛋白浓度不受绝大部分样品中的化学物质的影响,可以兼容样品中高达5%的SDS,5%的Triton X-100,5%的Tween 20, 60, 80。但受螯合剂和略高浓度的还原剂的影响,需确保EDTA低于10mM,无EGTA,二硫苏糖醇低于1mM,β-巯基乙醇低于1mM.不适用BCA法时 建议使用Bradford蛋白浓度测定试剂盒。
5. 操作时要带手套。
五、储存
BCA 试剂A 和BCA 试剂B 室温保存,蛋白标准液-20℃冻存。
