最新文章专题视频专题问答1问答10问答100问答1000问答2000关键字专题1关键字专题50关键字专题500关键字专题1500TAG最新视频文章推荐1 推荐3 推荐5 推荐7 推荐9 推荐11 推荐13 推荐15 推荐17 推荐19 推荐21 推荐23 推荐25 推荐27 推荐29 推荐31 推荐33 推荐35 推荐37视频文章20视频文章30视频文章40视频文章50视频文章60 视频文章70视频文章80视频文章90视频文章100视频文章120视频文章140 视频2关键字专题关键字专题tag2tag3文章专题文章专题2文章索引1文章索引2文章索引3文章索引4文章索引5123456789101112131415文章专题3
当前位置: 首页 - 正文

SDS缓冲液制备

来源:动视网 责编:小OO 时间:2025-10-07 00:56:31
文档

SDS缓冲液制备

SDS-PAGE的试剂配置:(a)浓缩胶缓冲液——1.0MpH6.8的Tris-Hcl溶液:称取12.11gTris置于100ml的容量瓶中,加入约80ml去离子水,充分搅拌溶解;用盐酸调节pH值至6.8后,将溶液定容,室温下保存备用。(b)分离胶缓冲溶液——1.5MpH8.8的Tris-Hcl溶液:称取18.17gTris于100ml的容量瓶中,加入约80ml去离子水,充分搅拌溶解;用盐酸调节至8.8后,将溶液定容保存。(c)SDS上样缓冲液:取0.063mlpH6.8的Tris-Hcl缓冲
推荐度:
导读SDS-PAGE的试剂配置:(a)浓缩胶缓冲液——1.0MpH6.8的Tris-Hcl溶液:称取12.11gTris置于100ml的容量瓶中,加入约80ml去离子水,充分搅拌溶解;用盐酸调节pH值至6.8后,将溶液定容,室温下保存备用。(b)分离胶缓冲溶液——1.5MpH8.8的Tris-Hcl溶液:称取18.17gTris于100ml的容量瓶中,加入约80ml去离子水,充分搅拌溶解;用盐酸调节至8.8后,将溶液定容保存。(c)SDS上样缓冲液:取0.063mlpH6.8的Tris-Hcl缓冲
SDS-PAGE的试剂配置:

(a)浓缩胶缓冲液——1.0M pH 6.8的Tris-Hcl溶液:称取12.11g Tris置于100ml 的容量瓶中,加入约80ml 去离子水,充分搅拌溶解;用盐酸调节pH值至6.8后,将溶液定容,室温下保存备用。

(b)分离胶缓冲溶液——1.5M pH 8.8的Tris-Hcl溶液:称取18.17g Tris于100ml的容量瓶中,加入约80ml去离子水,充分搅拌溶解;用盐酸调节至8.8后,将溶液定容保存。

(c)SDS上样缓冲液:取0.063ml pH 6.8的Tris-Hcl缓冲液与5ml的容量瓶中,依次加入0.1g十二烷基环酸钠SDS、5.0mg溴酚蓝BPB和0.5ml甘油;加入适量去离子水搅拌溶解后,定容至 5 ml;小份(1 ml/份)分装后,在-20℃下保存备用。 

(d)SDS-PAGE 电泳缓冲液:称取 3.02g 三羟甲基氨基甲烷(Tris)于 1 L 的容量瓶中,加入 18.8 g 甘氨酸(Glycine)和 1.0 g SDS;加去离子水溶解并混合均匀后,定容至 1 L,室温下保存备用。 

(e)30%丙烯酰胺溶液:称取 29.0 g 丙烯酰胺(Acr)和 1.0 N, N′-亚甲基双丙烯酰胺(Bis)于 100 ml 棕色的容量瓶中,加去离子水溶解并混匀后定容,放置于 4℃下保存备用。 

(f)10%(W/V)SDS 溶液:称取 10.0  g  SDS 于 100  ml 的容量瓶中,加入约 80  ml 去离子水;在 68 ℃的水浴中加热溶解,自然冷却至室温;加去离子水定容并,室温下保存备用。 

(g)10% (W/V)APS 溶液:称取 0.1g 过硫酸铵(APS),置于 1.5  ml 离心管中,加去离子水 1 ml 溶解即可;4℃保存备用。 

(h)考马斯亮蓝染色液:称取 0.5 g 考马斯亮蓝R 250 于500ml 的容量瓶中,加入约 225 ml 甲醇和 50 ml 乙酸;充分搅拌溶解后,加入去离子水定容,室温下保存备用。 

(i)脱色液:分别量取 50  ml 甲醇和 50  ml 乙酸,置于 500  ml 的容量瓶中混合均匀;加入去离子水定容,室温下保存备用。

取待测蛋白样品 30μl,并加入30μl SDS上样缓冲液,将混合物振荡摇匀后置于100℃的水中煮5min,之后以12000r/min 离心1  min后备用。蛋白质分子量标准(Marker)采用同样的方法处理后作为参照物备用。 

实验

(a)配制 10 ml 15% 的分离胶(现配现用):将 2.3  ml 去离子水、5.0ml 30%丙烯酰胺溶液、2.5 ml 分离胶缓冲液、0.1 ml 10% SDS溶液和 0.1 ml 10% APS 溶液置于烧杯中混合均匀;加入 0.008 ml N′, N′-四甲基乙二胺(TEMED),迅速摇匀。 

(b)分离胶的聚合:迅速将配好的分离胶加入制胶槽中,注意应沿着边缘缓慢加入,以免气泡进入;凝胶液加至约距前玻璃板顶端1.5 cm或距梳子齿0.5 cm处时,轻轻在分离胶溶液上覆盖一层双蒸水(或正丁醇)封胶,使凝胶表面变得平整;静置0.5-1  h,使凝胶聚合;待凝胶聚合后,稍微倾斜模具,除去上面的水层,并用滤纸吸

尽残留的液体。 

(c)配制 3 ml 5% 的浓缩胶(现配现用):将 2.1  ml 去离子水、0.5  ml  30%丙烯酰胺溶液、0.38 ml 浓缩胶缓冲液、0.03 ml 10% SDS溶液和 0.03ml 10% APS 溶液置于烧杯中混合均匀;加入 0.006 ml TEMED,迅速摇匀。 

(d)浓缩胶的聚合:迅速将配好的浓缩胶添加到聚合后的分离胶上面,并将梳子插入凝胶内,至梳子齿的底部与前玻璃板的顶端平齐,小心避免混入气泡;静置 0.5-1h,使凝胶聚合。 

(e) 加样孔的制备:将胶板放入电泳槽中,在上下电泳槽中添加电泳缓冲液,使凝胶的上下端均能浸泡在缓冲液中;轻轻拔出梳子,注意不要将加样孔撕破。 

(f)加样及电泳:分别取 10  μl 蛋白 Marker 和样品,分别加至电泳槽的加样孔底部,避免带入气泡;接通电源,上槽(加样孔端)接负极,下槽接正极;调节电压至74V,待溴酚蓝前沿进入分离胶时,增加电压至 105V;电泳大约需要 1.5-2  h,待溴酚蓝刚刚跑出分离胶的底部时,切断电源,从电极上拔掉电极插头,取出玻璃板。 

(g)凝胶板的剥离:戴上手套,小心移去两玻璃板之间的隔片;利用专用的铲子轻轻撬开玻璃板,小心从制胶板上将凝胶剥下,弃去浓缩胶;在右上角切去小片作为定位标记。 

    (h)染色及脱色:用清水洗胶,将分离胶放入染色液中缓慢摇动,染色约 30min。从染色液中将凝胶取出用水漂洗后,将胶放入脱色液中进行扩散脱色,直到背景蓝色褪淡,见到条带。根据具体情况,大约需要换 3-5次洗脱液。

文档

SDS缓冲液制备

SDS-PAGE的试剂配置:(a)浓缩胶缓冲液——1.0MpH6.8的Tris-Hcl溶液:称取12.11gTris置于100ml的容量瓶中,加入约80ml去离子水,充分搅拌溶解;用盐酸调节pH值至6.8后,将溶液定容,室温下保存备用。(b)分离胶缓冲溶液——1.5MpH8.8的Tris-Hcl溶液:称取18.17gTris于100ml的容量瓶中,加入约80ml去离子水,充分搅拌溶解;用盐酸调节至8.8后,将溶液定容保存。(c)SDS上样缓冲液:取0.063mlpH6.8的Tris-Hcl缓冲
推荐度:
  • 热门焦点

最新推荐

猜你喜欢

热门推荐

专题
Top